トミナガ モトキ
准教授 (https://researchmap.jp/7000010150/)
(教育学部)
理工学術院(大学院先進理工学研究科)
-1995年 | 姫路工業大学 理学部 生命科学科 |
-2000年 | 姫路工業大学 理学研究科 生命科学専攻 |
理学(博士) 姫路工業大学 植物分子・生理科学
2000年04月-2002年12月 | 郵政省通信総合研究所関西先端研究センター専攻研究員 |
2003年01月-2005年12月 | 独立行政法人通信総合研究所関西先端研究センター日本学術振興会 特別研究員 |
2006年01月-2007年09月 | 東京大学医科学研究所特任助教 |
2007年10月-2008年03月 | 理化学研究所和光中央研究所研究員 |
2008年04月-2014年09月 | 理化学研究所基幹研究所専任研究員 |
2011年10月-2015年03月 | 科学技術振興機構さきがけさきがけ研究者 兼任 |
2012年09月-2014年09月 | 理化学研究所きぼう船内実験チーム兼務 |
2014年09月-2017年03月 | 早稲田大学教育・総合科学学術院専任講師 |
2017年04月- | 早稲田大学教育・総合科学学術院准教授 |
日本生物物理学会
日本細胞生物学会
日本植物生理学会
日本植物学会
生物学 / 基礎生物学 / 植物分子・生理科学
シーズ分野:ライフサイエンス
Motoki Tominaga; Kenji Morita; Etsuo Yokota; Seiji Sonobe; Teruo Shimmen
Protoplasma199p.83 - 921997年03月-
Motoki Tominaga; Seiji Sonobe; Teruo Shimmen
Plant Cell Physiol.39(12)p.1342 - 13491998年12月-
Motoki Tominaga; Seiji Sonobe; Teruo Shimmen
Protoplasma213p.46 - 542000年03月-
Motoki Tominaga; Etsuo Yokota; Luis Vidali; Seiji Sonobe; Peter K. Hepler; Teruo Shimmen
Planta210(5)p.836 - 8432000年04月-
Sayaka Inada; Motoki Tominaga; Teruo Shimmen
Plant Cell Physiol.41(6)p.657 - 6652000年06月-
Etsuo Yokota; Naotaka Imamichi; Motoki Tominaga; Teruo Shimmen
Protoplasma213p.184 - 1932000年09月-
Motoki Tominaga; Hiroaki Kojima; Etsuo Yokota; Hidefumi Orii; Rinna Nakamori; Eisaku Katayama; Michael Anson; Teruo Shimmen; Kazuhiro Oiwa
EMBO J.22(6)p.1263 - 12722003年03月-
Etsuo Yokota; Luis Vidali; Motoki Tominaga; Hiroshi Tahara; Hidefumi Orii; Yosuke Morizane; Peter K. Hepler; Teruo Shimmen
Plant Cell Physiol.44(10)p.1088 - 10992003年10月-
Pankaj Dhonukshe; Ilya Grigoriev; Rainer Fischer; Motoki Tominaga; David G. Robinson; Jiri Hasek; Tomasz Pacioreka; Jan Petrasek; Daniela Seifertova; Ricardo Tejosl; Lee A. Meisel; Eva Zazimalova; Theodorus W. J. Gadella, Jr; York-Dieter Stierhofa; Takashi Ueda; Kazuhiro Oiwa; Anna Akhmanova; Roland Brock; Anne Spang; Jiri Friml
Proc Natl Acad Sci USA.105(11)p.4489 - 44942008年03月-
Atsuko Era; Motoki Tominaga; Kazuo Ebine; Chie Awai; Chieko Saito; Kimitsune Ishizaki; Katsuyuki T. Yamato; Takayuki Kohchi; Akihiko Nakano; Takashi Ueda
Plant Cell Physiol.50(6)p.1041 - 10482009年06月-
Chieko Saito; Tomohiro Uemura; Chie Awai; Motoki Tominaga; Kazuo Ebine; Jun Ito; Takashi Ueda; Hiroshi Abe; Miyo Terao Morita; Masao Tasaka; Akihiko Nakano
Plant J.68(1)p.64 - 732011年10月-
Takahiro Hamada; Motoki Tominaga; Takashi Fukaya; Masayoshi Nakamura; AkihikoNakano; Yuichiro Watanabe; Takashi Hashimoto; Tobias I. Baskin
Plant Cell Physiol.53(4)p.699 - 7082012年04月-
Motoki Tominaga; Hiroaki Kojima; Etsuo Yokota; Rinna Nakamori; Michael Anson; Teruo Shimmen; Kazuhiro Oiwa
J Biol Chem.287(36)p.30711 - 307182012年08月-
Motoki Tominaga; Atsushi Kimura; Etsuo Yokota; Takeshi Haraguchi; TeruoShimmen; Keiichi Yamamoto; Akihiko Nakano; Kohji Ito
Dev. Cell27(3)p.345 - 3522013年11月-
*Takeshi Haraguchi; *Motoki Tominaga; Rie Matsumoto; Kei Sato; Akihiko Nakano; Keiichi Yamamoto; Kohji Ito (*Both authors contributed equally to this work.)
J. Biol. Chem.289(18)p.12343 - 123552014年03月-
Ralph P. Diensthuber; Motoki Tominaga; Matthias Preller; Falk K. Hartmann; Hidefumi Orii; Igor Chizhov; Kazuhiro Oiwa; Georgios Tsiavaliaris
FASEB J.29(1)p.81 - 942014年10月-
富永基樹
光合成研究25(1)p.42 - 472015年04月-
Tominaga Motoki; Ito Kohji
The molecular mechanism and physiological role of cytoplasmic streaming.272015年-
ISSN:1879-0356
概要::Cytoplasmic streaming occurs widely in plants ranging from algae to angiosperms. However, the molecular mechanism and physiological role of cytoplasmic streaming have long remained unelucidated. Recent molecular genetic approaches have identified specific myosin members (XI-2 and XI-K as major and XI-1, XI-B, and XI-I as minor motive forces) for the generation of cytoplasmic streaming among 13 myosin XIs in Arabidopsis thaliana. Simultaneous knockout of these myosin XI members led to a reduced velocity of cytoplasmic streaming and marked defects of plant development. Furthermore, the artificial modifications of myosin XI-2 velocity changed plant and cell sizes along with the velocity of cytoplasmic streaming. Therefore, we assume that cytoplasmic streaming is one of the key regulators in determining plant size.
Haraguchi, Takeshi; Tominaga, Motoki; Nakano, Akihiko; Nakano, Akihiko; Yamamoto, Keiichi; Ito, Kohji
Plant and Cell Physiology57(8)p.1732 - 17432016年08月-
ISSN:00320781
概要:© The Author 2016.Arabidopsis possesses 13 genes encoding class-XI myosins. Among these, myosin XI-I is phylogenetically distant. To examine the molecular properties of Arabidopsis thaliana myosin XI-I (At myosin XI-I), we performed in vitro mechanical and enzymatic analyses using recombinant constructs of At myosin XI-I. Unlike other biochemically studied class-XI myosins, At myosin XI-I showed extremely low actinactivated ATPase activity (Vmax = 3.7 Pi s1 head1). The actin-sliding velocity of At myosin XI-I was 0.25 mm s1, >10 times lower than those of other class-XI myosins. The ADP dissociation rate from acto-At myosin XI-I was 17 s1, accounting for the low actin-sliding velocity. In contrast, the apparent affinity for actin in the presence of ATP, estimated from Kapp (0.61 mM) of actin-activated ATPase, was extremely high. The equilibrium dissociation constant for actin was very low in both the presence and absence of ATP, indicating a high affinity for actin. To examine At myosin XI-I motility in vivo, green fluorescent protein-fused full-length At myosin XI-I was expressed in cultured Arabidopsis cells. At myosin XI-I localized not only on the nuclear envelope but also on small dots moving slowly (0.23 mm s1) along actin filaments. Our results show that the properties of At myosin XI-I differ from those of other Arabidopsis class-XI myosins. The data suggest that At myosin XI-I does not function as a driving force for cytoplasmic streaming but regulates the organelle velocity, supports processive organelle movement or acts as a tension generator.
段中瑞; 富永基樹
化学工業68p.56 - 602017年-
Rula, Sa; Suwa, Takahiro; Kijima, Saku T.; Haraguchi, Takeshi; Wakatsuki, Shinryu; Sato, Naruki; Duan, Zhongrui; Tominaga, Motoki; Uyeda, Taro Q.P.; Ito, Kohji
Biochemical and Biophysical Research Communications495(3)p.2145 - 21512018年01月-
ISSN:0006291X
概要:© 2017 The Authors There are two classes of myosin, XI and VIII, in higher plants. Myosin XI moves actin filaments at high speed and its enzyme activity is also very high. In contrast, myosin VIII moves actin filaments very slowly with very low enzyme activity. Because most of these enzymatic and motile activities were measured using animal skeletal muscle α-actin, but not plant actin, they would not accurately reflect the actual activities in plant cells. We thus measured enzymatic and motile activities of the motor domains of two Arabidopsis myosin XI isoforms (MYA2, XI-B), and one Arabidopsis myosin VIII isoform (ATM1), by using three Arabidopsis actin isoforms (ACT1, ACT2, and ACT7). The measured activities were different from those measured by using muscle actin. Moreover, Arabidopsis myosins showed different enzymatic and motile activities when using different Arabidopsis actin isoforms. Our results suggest that plant actin should be used for measuring enzymatic and motile activities of plant myosins and that different actin isoforms in plant cells might function as different tracks along which affinities and velocities of each myosin isoform are modulated.
Duan, Zhongrui; Tominaga, Motoki
Biochemical and Biophysical Research Communications2018年01月-
ISSN:0006291X
概要:© 2018 The Authors. Actin is one of the three major cytoskeletal components in eukaryotic cells. Myosin XI is an actin-based motor protein in plant cells. Organelles are attached to myosin XI and translocated along the actin filaments. This dynamic actin-myosin XI system plays a major role in subcellular organelle transport and cytoplasmic streaming. Previous studies have revealed that myosin-driven transport and the actin cytoskeleton play essential roles in plant cell growth. Recent data have indicated that the actin-myosin XI cytoskeleton is essential for not only cell growth but also reproductive processes and responses to the environment. In this review, we have summarized previous reports regarding the role of the actin-myosin XI cytoskeleton in cytoplasmic streaming and plant development and recent advances in the understanding of the functions of actin-myosin XI cytoskeleton in Arabidopsis thaliana.
Takeshi Haraguchi; Kohji Ito; Zhongrui Duan; Sarula; Kento Takahashi; Yuno Shibuya; Nanako Hagino; Yuko Miyatake; Akihiko Nakano; Motoki Tominaga
Plant Cell Physiol.2018年-
富永基樹; 大岩和弘
21世紀COE生命科学若手ワークショップ(兵庫県立大学)2004年01月24日
開催地:兵庫
富永基樹; 大岩和弘
理研セミナー(理化学研究所)2004年
開催地:埼玉
Motoki Tominaga
Gordon Research Conference (Plant and Fungal cytoskeleton)(Gordon Research Conference)2004年08月09日
開催地:ニューハンプシャー
富永基樹; 小嶋寛明; 中森鈴奈; 新免輝男; 大岩和弘
植物細胞における細胞骨格の機能発現:滑り説から50年(基礎生物学研究所)2006年12月26日
開催地:愛知
富永基樹
第847回東大生物科学セミナー(東京大学)2008年
開催地:東京
富永基樹
基礎生物学研究所部門公開セミナ―(基礎生物学研究所)2009年06月05日
開催地:愛知
富永基樹
奈良先端大学公開セミナ―(奈良先端科学技術大学院大学)2009年
開催地:奈良
富永基樹
KARCコロキウム(独立行政法人情報通信研究機構)2010年03月09日
開催地:神戸
Motoki Tominaga
Global COE Symposium “Microscopy and Cell Biology”(Hyogo University)2010年03月10日
開催地:兵庫
Motoki Tominaga
Green Biotechnology for Global Sustainability(Osaka University)2013年03月09日
開催地:大阪
富永基樹
大阪大学生物科学セミナー(大阪大学)2013年06月04日
開催地:大阪
富永基樹
神谷宣郎先生 生誕百周年記念シンポジウム(大阪大学)2013年07月13日
開催地:大阪
富永基樹
シンポジウム「細胞を創る操る」(奈良先端科学技術大学院大学)2013年11月28日
開催地:奈良
富永基樹
公開シンポジウム「多様な光合成の世界」 (光合成学会)2014年05月30日
開催地:奈良
富永基樹
学習院大学生命科学シンポジウム「生命の秘密を解く鍵をもとめて」 (学習院大学)2014年05月31日
開催地:東京
富永基樹
25th International Conference on Arabidopsis Research (ICAR)(International Conference on Arabidopsis Research)2014年08月01日
開催地:バンクーバー
富永基樹
第1038回東大生物科学セミナー(東京大学)2015年11月04日
開催地:東京
富永基樹
第38回日本分子生物学会,シンポジウム「植物細胞は忙しい:駆け巡るオルガネラの動的制御機構」 (日本分子生物学会)2015年12月04日
開催地:神戸
富永基樹
筑波大学植物分子生学セミナー(筑波大学)2016年01月26日
開催地:筑波
富永基樹
奈良先端大セミナー(奈良先端科学技術大学院大学)2016年10月28日
開催地:奈良
富永基樹
バイオマスイノベーション研究会(近畿バイオインダストリー振興会議)2017年03月22日
開催地:大阪
富永基樹
化学工学会第49回秋季大会(化学工学会)2017年09月22日
開催地:名古屋
富永基樹
大隅基礎科学創成財団,第一回創発セミナー(大隅基礎科学創成財団)2018年03月16日
開催地:東京
研究種別:
可視化による膜交通の分子機構の解明と植物高次システムへの展開2013年-0月-2018年-0月
配分額:¥207350000
研究種別:
ミオシン速度改変による植物特異的細胞内交通機構と高次機能の解析2011年-0月-2014年-0月
配分額:¥4680000
研究種別:
可視化による膜交通の選別分子機構の理解と植物の高次機能への展開配分額:¥32500000
研究種別:
膜交通における選別輸送の分子機構の解明と植物の高次システムへの展開2008年-0月-2014年-0月
配分額:¥596440000
研究種別:
モータータンパク質の運動特性が細胞内膜輸送に果たす役割配分額:¥3670000
2017年度
研究成果概要: 本研究は,陸上植物の進化に伴い多様化したミオシンXIの最も原始的な機能を同定することを目的とする。そのため,陸上植物進化の基部に位置するゼニゴケのミオシンXIに蛍光タンパク質を融合し,高等植物シロイヌナズナの培養細胞内で発現させ... 本研究は,陸上植物の進化に伴い多様化したミオシンXIの最も原始的な機能を同定することを目的とする。そのため,陸上植物進化の基部に位置するゼニゴケのミオシンXIに蛍光タンパク質を融合し,高等植物シロイヌナズナの培養細胞内で発現させ,ライブイメージング解析を行った。その結果,ゼニゴケミオシンXIは,シロイヌナズナ細胞内において小胞体と一部共局在し,活発な運動を行う事が明らかとなった。すなわち,植物ミオシンXIが持つ最も原始的な機能として、オルガネラ輸送を伴った原形質流動の発生にある可能性が示唆された。本研究成果は,第7回分子モーター討論会,日本植物学会第81回大会で発表した。
2018年度
研究成果概要: 本研究では,植物の進化に伴い多様化したミオシンXIの最も原始的な機能の同定を試みた。そのため,陸上植物進化の基部に位置するゼニゴケのミオシンXIに蛍光タンパク質を融合し,高等植物シロイヌナズナのミオシンXI多重ノックアウト株で発... 本研究では,植物の進化に伴い多様化したミオシンXIの最も原始的な機能の同定を試みた。そのため,陸上植物進化の基部に位置するゼニゴケのミオシンXIに蛍光タンパク質を融合し,高等植物シロイヌナズナのミオシンXI多重ノックアウト株で発現させた。その結果,ゼニゴケミオシンXIは,シロイヌナズナ細胞内において原形質流動を発生させ,多重ノックアウトによる成長阻害を回復させる事が明らかとなった。すなわち,植物ミオシンXIの分子機能が,原形質流動を発生し成長を制御するため進化的に保存されている事が示唆された。本研究成果は,Plant Biology 2018や日本植物学会第82回大会等で発表した。
科目名 | 開講学部・研究科 | 開講年度 | 学期 |
---|---|---|---|
細胞生物学II | 教育学部 | 2019 | 秋学期 |
細胞生物学I | 教育学部 | 2019 | 春学期 |
生物学演習 | 教育学部 | 2019 | 通年 |
生物学実験VI | 教育学部 | 2019 | 通年 |
生物学特殊演習 B | 教育学部 | 2019 | 通年 |
生物学通論実験I | 教育学部 | 2019 | 夏季集中 |
生物学通論実験I | 教育学部 | 2019 | 夏季集中 |
生物学通論実験II | 教育学部 | 2019 | 秋学期 |
修士論文(生命理工) | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 通年 |
Research on Regulation Biology | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 通年 |
細胞生物学研究 | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 通年 |
Integrative Bioscience and Biomedical Engineering B | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 秋学期 |
総合生命理工学特論B | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 秋学期 |
Seminar on Cell Biology A | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 春学期 |
細胞生物学演習A | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 春学期 |
Seminar on Cell Biology B | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 秋学期 |
細胞生物学演習B | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 秋学期 |
Seminar on Cell Biology C | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 春学期 |
細胞生物学演習C | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 春学期 |
Seminar on Cell Biology D | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 秋学期 |
細胞生物学演習D | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 秋学期 |
Master's Thesis (Department of Integrative Bioscience and Biomedical Engineering) | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 通年 |
細胞生物学研究 | 大学院先進理工学研究科 | 2019 | 通年 |